組織單細胞懸液的制備

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剪碎法：

將組織塊放入平皿后，加入少量PBS+10%胎牛血清；用眼科剪將組織剪至勻漿狀，加入10 ml PBS+10%胎牛血清；用吸管吸取組織勻漿，用100 目不銹鋼濾網過濾到試管內；離心沉淀1500 rpm×3 min，再用PBS+10%胎牛血清洗3 次，每次以500 rpm 短時低速離心除去細胞碎片，以200 目不銹鋼濾網過濾去細胞團塊。作細胞計數(shù)并調整細胞濃度為（2～5）×107 /ml。常溫下放置, 待測細胞的活力。分離前用胎牛血清懸起細胞濃度為1×107/ml 的單細胞懸液備用。

勻漿器法：

用眼科剪將組織剪成小塊；放入70 ml 組織研磨器內，加入2 ml PBS+10%胎牛血清；緩慢轉動研棒，研磨至勻漿；用10 ml PBS+10%胎牛血清沖洗研器；收集細胞懸液，經200 目不銹鋼濾網過濾；離心沉淀800 prm×2 min ，再用PBS 洗3 次，離心沉淀。以下處理同剪碎法。

細胞計數(shù)方法：

細胞計數(shù)法是用來計數(shù)細胞懸液中細胞數(shù)量的一種方法。一般利用計數(shù)板（血球計數(shù)板）進行。即可用于分離（散）細胞培養(yǎng)接種前計數(shù)所制備的細胞懸液中的細胞數(shù)量，也可用于對培養(yǎng)物的細胞數(shù)量進行計數(shù)。不論計數(shù)的對象如何，均須制備分散的細胞懸液。

計數(shù)與計算過程：

1）、在細胞計數(shù)板中央放置計數(shù)的蓋玻片。

2）、用玻璃虹吸管吸取細胞，讓虹吸管在蓋玻片上或下側的計數(shù)板凹蹧處流出懸液，至蓋玻片被液體充滿為止。

3）、置顯微鏡下計數(shù)四角大方格內的細胞總數(shù)。對于壓線的細胞只計數(shù)在上線和左線者，對于細胞團按單個細胞計數(shù)。

4）、按下式計數(shù)細胞懸液的密度：細胞密度＝（4 個大格細胞總數(shù)/4）×104 個/ml ×稀釋倍數(shù)公式中乘以104 因為計數(shù)板中每一個大格的體積為：1.0mm（長）×1.0mm（寬）×0.1mm（高）＝0.1mm3 而 1ml＝1000mm3

細胞計數(shù)要點：

1.進行細胞計數(shù)時，要求懸液中細胞數(shù)目不低于104 個/ml，如果細胞數(shù)目很少要進行離心再懸浮于少量培養(yǎng)液中；顯微鏡下計數(shù)時，遇到2 個以上細胞組成的細胞團，應按單個細胞計算。如果細胞團>10％，說明細胞分散不充分; 或細胞數(shù)<200 個/10mm2 或>500 個/10 mm2時，說明稀釋不當，需重新制備細胞懸液。

2.要求細胞懸液中的細胞分散良好，否則影響計數(shù)準確性。

3.取樣計數(shù)前，應充分混勻細胞懸液，尤其是多次取樣計數(shù)時更要注意每次取樣都要混勻，以求計數(shù)準確；

4. 數(shù)細胞的原則是只數(shù)完整的細胞，若細胞聚集成團時，只按照一個細胞計算。如果細胞壓在格線上時，則只計上線，不計下線，只計左線，不計右線。

5. 操作時，注意蓋玻片下不能有氣泡，也不能讓懸液流入旁邊槽中，否則要重新計數(shù)。

初學者易犯的錯誤：

1. 計數(shù)前未將待測懸液吹打均勻。

2. 滴入細胞懸液時蓋玻片下出現(xiàn)氣泡。

3. 滴入懸液時的量太多，至使細胞懸液流入旁邊的槽中。

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