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類器官培養(yǎng)總是不成功,活學(xué)活用經(jīng)典培養(yǎng)方案WENR是關(guān)鍵!

來(lái)源:北京義翹神州科技股份有限公司   2025年03月17日 16:41  

前言

類器官已成為生命科學(xué)和醫(yī)學(xué)研究領(lǐng)域的“明星模型”,在疾病機(jī)制研究、藥物篩選、精準(zhǔn)醫(yī)療等方面展現(xiàn)出巨大潛力。然而,許多科研人員在嘗試類器官培養(yǎng)時(shí),常常面臨“無(wú)法形成結(jié)構(gòu)”、“細(xì)胞活性低”、“傳代失敗”等問(wèn)題。

探究其根本,培養(yǎng)體系中細(xì)胞因子的選擇和配比可能是成敗的關(guān)鍵!

接下來(lái),我們將會(huì)結(jié)合類器官經(jīng)典培養(yǎng)方案WENR(Wnt3a、EGF、Noggin、R-Spondins),解析“四大護(hù)法”如何各顯神通,助你攻克類器官培養(yǎng)難關(guān)!

 

 

01 WENR何以成為類器官培養(yǎng)經(jīng)典?

類器官的經(jīng)典培養(yǎng)方案WENR(或稱為WNER)最初由荷蘭Hubrecht研究所的Hans Clevers團(tuán)隊(duì)開(kāi)發(fā),其核心成分包括Wnt-3a、EGF、Noggin和R-Spondins。常被稱為類器官培養(yǎng)的“四大護(hù)法”。

WENR方案在類器官的研究與實(shí)踐中不斷演化,通過(guò)與其他細(xì)胞因子或小分子抑制劑的巧妙結(jié)合,衍生出適用于多種類器官構(gòu)建的培養(yǎng)條件。目前,WENR方案已在胃、小腸、結(jié)腸、胰腺、肝臟等多種類器官培養(yǎng)中得到廣泛應(yīng)用。

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WENR方案用于多種類器官培養(yǎng)(源自Bindi M. Doshi, PhD.

 

02 WENR“四大護(hù)法”

1 Wnt-3a:干細(xì)胞增殖的“發(fā)動(dòng)機(jī)”

Wnt-3a作為經(jīng)典Wnt通路的激活劑,通過(guò)穩(wěn)定β-catenin蛋白,啟動(dòng)下游靶基因(如c-Myc、Cyclin D1),參與細(xì)胞發(fā)育、增殖和分化過(guò)程。Alessandra Merenda在其綜述中深入總結(jié)了Wnt信號(hào)通路在類器官領(lǐng)域的關(guān)鍵作用。文中指出,無(wú)論成體干細(xì)胞組織來(lái)源如何,其衍生的類器官在增殖、干性維持及終末分化特化細(xì)胞等關(guān)鍵環(huán)節(jié),都依賴于經(jīng)典Wnt信號(hào)通路。如在小鼠結(jié)腸類器官的建立過(guò)程中,添加外源性Wnt-3a對(duì)其增殖至關(guān)重要。不添加Wnt-3a,類器官超過(guò)3天后無(wú)法存活。

3.jpg

Wnt-3a在腸類器官中培養(yǎng)中的作用(源自文獻(xiàn):doi: 10.1016/j.tcb.2019.10.003)

 

2 EGF:細(xì)胞增殖的“加速器”

表皮生長(zhǎng)因子(EGF)與受體結(jié)合,激活MAPK/ERK通路,促進(jìn)細(xì)胞增殖和存活。EGF刺激上皮細(xì)胞增殖、血管生成和表皮細(xì)胞分化,促進(jìn)類器官三維結(jié)構(gòu)的形成。EGF廣泛應(yīng)用于胃腸道、肝臟、甲狀腺等類器官培養(yǎng),促進(jìn)細(xì)胞集落形成和組織結(jié)構(gòu)穩(wěn)定性。盡管EGF并非類器官形成的必需因子,但能顯著增加類器官體積。

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優(yōu)化的WENR方案在人胃腸道類器官構(gòu)建過(guò)程中的應(yīng)用(源自文獻(xiàn):doi: 10.1186/s13619-020-00040-w)

 

3 Noggin:抑制分化的“守門員”

在類器官構(gòu)建過(guò)程中,Noggin與細(xì)胞增殖密切相關(guān)。Noggin是一種骨形態(tài)發(fā)生蛋白(BMP)的內(nèi)源性抑制劑,通過(guò)阻斷BMP與受體結(jié)合,促進(jìn)干細(xì)胞增殖,為類器官形成提供充足的細(xì)胞。Noggin還通過(guò)抑制BMP信號(hào)通路,維持干細(xì)胞干性,影響細(xì)胞的命運(yùn)決定和分化過(guò)程。

 

在類器官培養(yǎng)中,Noggin常與Wnt-3a和R-Spondins一起使用,以平衡BMP和Wnt信號(hào)通路,促進(jìn)類器官的生長(zhǎng)和分化。因此,Noggin在類器官培養(yǎng)中不僅促進(jìn)增殖,還精細(xì)調(diào)控細(xì)胞的分化。

5.jpg

Noggin抑制細(xì)胞增殖的分子機(jī)制(源自文獻(xiàn):doi: 10.1242/bio.20149977)

 

4 R-Spondins:Wnt信號(hào)的“放大器”

R-spondin是Wnt信號(hào)通路的激活劑,通過(guò)與Frizzled和LRP5/6受體結(jié)合,增強(qiáng)Wnt信號(hào)在多種組織中的表達(dá),促進(jìn)干細(xì)胞增殖與類器官結(jié)構(gòu)形成。T. Thalheim等人發(fā)現(xiàn),沒(méi)有R-spondin時(shí),類器官在4-5天后停止生長(zhǎng)。在1.2% R-spondin濃度下培養(yǎng)的類器官生長(zhǎng)非常迅速,生長(zhǎng)時(shí)間超過(guò)5天后經(jīng)常破裂,其管腔內(nèi)積累了大量細(xì)胞碎片。在10%或25% R-spondin濃度下培養(yǎng)的類器官生長(zhǎng)速度比1.2%稍慢,但不會(huì)破裂。

6.jpg

不同濃度的R-spondin影響腸類器官的生長(zhǎng)狀態(tài)(源自文獻(xiàn):doi: 10.1016/j.ydbio.2017.10.013)

 

03 WENR實(shí)戰(zhàn)避坑Tips

Wnt過(guò)度激活會(huì)導(dǎo)致類器官結(jié)構(gòu)紊亂,因此Wnt-3a濃度需嚴(yán)格控制。并且R-spondin需要和Wnt-3a協(xié)同使用,單獨(dú)使用效果有限。建議根據(jù)類器官類型優(yōu)化Wnt-3a的濃度,一般為50-100 ng/mL。在培養(yǎng)后期也可以動(dòng)態(tài)調(diào)控其濃度。

 

EGF易被蛋白酶降解,建議使用無(wú)血清培養(yǎng)基。EGF長(zhǎng)期高濃度,可能會(huì)誘導(dǎo)異常分化,建議定期更換培養(yǎng)基。EGF一般使用濃度為50 ng/mL。在腫瘤類器官(如腸癌)中,其濃度需根據(jù)癌細(xì)胞特性調(diào)整。

 

Noggin與Wnt-3a協(xié)同作用,支持胃、腸道、肝臟、肺、胰腺等類器官的長(zhǎng)期培養(yǎng)。在肺類器官培養(yǎng)中,Noggin缺失會(huì)導(dǎo)致肺泡上皮細(xì)胞過(guò)早分化。在肝類器官中,其與Wnt3a的“雙劍合璧”是長(zhǎng)期傳代的關(guān)鍵。BMP信號(hào)的過(guò)度激活會(huì)導(dǎo)致類器官形成囊狀結(jié)構(gòu),失去功能性隱窩結(jié)構(gòu)。

S-spondin有4個(gè)亞型(RSPO1-4),不同組織來(lái)源的類器官可能需特異性選擇。Wnt-3a和R-spondin易失活,建議分裝后-80℃保存。

 

常見(jiàn)問(wèn)題排查表,僅供參考:

問(wèn)題現(xiàn)象

可能原因

解決方案

類器官結(jié)構(gòu)松散

Wnt3a活性不足

提高Wnt3a濃度或更換高活性批次

細(xì)胞大量死亡

EGF降解或濃度過(guò)低

縮短換液周期,驗(yàn)證EGF生物活性

傳代后無(wú)法增殖

Noggin/R-Spondin比例失調(diào)

重新優(yōu)化因子配比,檢查消化步驟

 

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細(xì)胞因子

貨號(hào)

純度

活性

Wnt-3a

WNT007-02H

≥ 90% (SEC-HPLC)

Active

EGF

GMP-10605-HNAE★

≥ 95% (SEC-HPLC)

Active

10605-HNAE

≥ 95% (SEC-HPLC)

Active

50482-M01H

≥ 95%

Active

50482-MNCH

≥ 95%

Active

NOG

10267-HNAH

≥ 95% (SEC-HPLC)

Active

50688-M02H

> 85%

Active

RSPO1

11083-HNAS

≥ 95% (SEC-HPLC)

Active

50316-M08S

> 95%

Active

★:GMP級(jí)細(xì)胞因子,現(xiàn)貨供應(yīng)!

 

【參考文獻(xiàn)】

1、 Nick Barker, et al. Lgr5(+ve) stem cells drive self-renewal in the stomach and build long-lived gastric units in vitro. Cell Stem Cell. 2010. doi: 10.1016/j.stem.2009.11.013.

2、 Toshiro Sato, Hans Clevers. SnapShot: Growing Organoids from Stem Cells. Cell. 2015. doi: 10.1016/j.cell.2015.06.028.

3、Bindi M. Doshi, PhD. Crucial Niche Factors for Organoid Cultures. 

4JuneSung Bae, et al. The Patient-Derived Cancer Organoids: Promises and Challenges as Platforms for Cancer Discovery. Cancers (Basel). 2022. doi: 10.3390/cancers14092144.

5、Alessandra Merenda, Nicola Fenderico, Madelon M Maurice. Wnt Signaling in 3D: Recent Advances in the Applications of Intestinal Organoids. Trends Cell Biol, 2020. doi: 10.1016/j.tcb.2019.10.003.

6Zhang, M., Liu, Y. & Chen, YG. Generation of 3D human gastrointestinal organoids: principle and applications. Cell Regen, 2020. doi.org/10.1186/s13619-020-00040-w

7、Kimberly A Wong, et al. Efficient retina formation requires suppression of both Activin and BMP signaling pathways in pluripotent cells. Biol Open, 2015. doi: 10.1242/bio.20149977.

8Torsten Thalheim, et al. Linking stem cell function and growth pattern of intestinal organoids. Developmental Biology, 2018. doi.org/10.1016/j.ydbio.2017.10.013

 

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