細胞轉(zhuǎn)染技術(shù)是現(xiàn)代生物研究與基因治療中的重要工具，數(shù)十年中，科研人員不斷探索發(fā)現(xiàn)、發(fā)展創(chuàng)新，逐漸從最初的病毒自然感染、化學轉(zhuǎn)染、電轉(zhuǎn)、病毒轉(zhuǎn)染，發(fā)展到到今天的基于內(nèi)源蛋白的轉(zhuǎn)染試劑，可謂開啟了轉(zhuǎn)染的新紀元。

轉(zhuǎn)染試劑前世今生

（1）早期實驗（20世紀60年代），利用病毒作為載體將外源DNA引入細胞，開啟了對基因轉(zhuǎn)染的探索。這一時期，研究者們主要依賴自然感染進行轉(zhuǎn)染，雖然技術(shù)相對簡單，但對細胞類型的限制較大，轉(zhuǎn)染效率也不高。

（2）化學轉(zhuǎn)染（20世紀80年代），Lipofectamine的問世。相較于傳統(tǒng)方法，Lipofectamine不僅轉(zhuǎn)染效率高，還能維持細胞活力，廣泛適用于多種細胞類型。這一技術(shù)的成功標志著轉(zhuǎn)染領(lǐng)域的重大突破，推動了基因表達、功能基因組學以及治療干預的研究。

（3）電轉(zhuǎn)染（1980年代末）。通過短暫的電場脈沖，可以瞬時提高細胞膜的通透性，允許DNA等分子進入細胞。電轉(zhuǎn)染的出現(xiàn)使得基因?qū)氲男蚀蠓嵘?，為基因治療、疫苗開發(fā)和基礎(chǔ)生物研究奠定了基礎(chǔ)。

（4）病毒載體轉(zhuǎn)染（1990年代）。1990年代，研究人員利用腺病毒作為載體將外源基因轉(zhuǎn)導入靶細胞，這一研究為基因治療和基因工程技術(shù)的發(fā)展奠定了基礎(chǔ)。同時，David Baltimore和Howard Temin在70年代的RNA病毒研究中發(fā)現(xiàn)了逆轉(zhuǎn)錄病毒的特性，使得逆轉(zhuǎn)錄病毒載體的構(gòu)建成為可能。

（5）新興技術(shù)（近年來）。近年來，細胞轉(zhuǎn)染方法不斷創(chuàng)新，以應對不同細胞類型和應用場景的挑戰(zhàn)，從而提高轉(zhuǎn)染效率和細胞存活率。以內(nèi)源蛋白凝聚體技術(shù)為基礎(chǔ)的ProteanFect轉(zhuǎn)染試劑利用內(nèi)源蛋白與核酸自組裝的特性，形成穩(wěn)定的核酸-蛋白復合物，有效包裹和保護核酸分子，提升轉(zhuǎn)染效率。

ProteanFect基于內(nèi)源蛋白的轉(zhuǎn)染試劑原理

ProteanFect是全球獨·家基于內(nèi)源蛋白納米顆粒的基因遞送系統(tǒng)，其核酸遞送原理包括：核酸藥物與內(nèi)源蛋白自動組裝形成納米顆粒（ProteanFect-核酸復合物），隨后通過細胞的主動攝入高效進入細胞；進入細胞后， ProteanFect-核酸復合物可快速釋放核酸分子；釋放后的核酸在胞內(nèi)行使功能，內(nèi)源蛋白被天然降解。

ProteanFect轉(zhuǎn)染試劑優(yōu)勢

• 高效表達：能夠在多種原代細胞（如T細胞、NK細胞）及細胞系中實現(xiàn)卓·越的外源基因遞送與表達

• 核酸載量高：支持多種核酸分子的共遞送，提升整體轉(zhuǎn)染效率

• 操作簡單：讓原代細胞轉(zhuǎn)染變得像HEK293一樣簡單

• 適用性廣：廣泛適合于多種原代細胞和難轉(zhuǎn)細胞系，且具備線性放大的能力，滿足不同實驗需求

• 安全性高：使用內(nèi)源蛋白，無免疫原性風險，轉(zhuǎn)染過程對細胞的損傷小

ProteanFect試劑盒類型及適用細胞系

現(xiàn)有的六款轉(zhuǎn)染試劑盒：

1. PT01--ProteanFect 轉(zhuǎn)染試劑盒

2. PT02--ProteanFect Max轉(zhuǎn)染試劑盒

3. PT03--ProteanFect Max小鼠原代免疫細胞轉(zhuǎn)染試劑盒

4. PT04--ProteanFect CRISPR Cas9基因編輯轉(zhuǎn)染試劑盒

5. PT05--ProteanFect CRISPRMax Cas9基因編輯轉(zhuǎn)染試劑盒

6. PT06-ProteanFect CRISPRMax Cas9小鼠原代免疫細胞基因編輯轉(zhuǎn)染試劑盒

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