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CAR-T治療的幕后英雄:慢病毒載體培養(yǎng)及純化

來(lái)源:北京義翹神州科技股份有限公司   2025年01月02日 16:38  

  言

慢病毒載體使得真核細(xì)胞基因修飾、表達(dá)變得更簡(jiǎn)單,在實(shí)驗(yàn)室研究、工業(yè)生產(chǎn)和臨床治療中應(yīng)用越來(lái)越廣泛。比如第三代自滅活慢病毒載體用于造血干細(xì)胞的基因修飾,治療原發(fā)性免疫缺陷和血紅蛋白病。慢病毒載體作為CAR轉(zhuǎn)導(dǎo)T細(xì)胞的載體,是CAR-T細(xì)胞生產(chǎn)過(guò)程中的關(guān)鍵原料,對(duì)實(shí)現(xiàn)大規(guī)模生產(chǎn)、縮短生產(chǎn)周期具有重要意義。

 

01慢病毒載體和CAR-T

慢病毒載體是一種源于人類(lèi)免疫缺陷病毒(HIV)的基因載體。在構(gòu)建慢病毒載體時(shí),為了避免產(chǎn)生有復(fù)制能力的病毒,會(huì)把HIV-1基因組分裝與不同的質(zhì)粒中,再共轉(zhuǎn)染細(xì)胞,獲得只有一次感染能力而無(wú)復(fù)制能力的慢病毒載體。目前慢病毒載體已從兩質(zhì)粒系統(tǒng)發(fā)展到四質(zhì)粒系統(tǒng),安全性不斷提高。目前常用的是四質(zhì)粒系統(tǒng),有更廣泛的應(yīng)用,比如基因編輯、基因治療、轉(zhuǎn)基因動(dòng)物、藥物研究、CAR-T細(xì)胞治療等。

慢病毒載體有更廣泛的宿主,能夠感染分裂和非分裂細(xì)胞。對(duì)于難轉(zhuǎn)染的細(xì)胞,如原代細(xì)胞、干細(xì)胞、不分化的細(xì)胞等,能極大的提高目的基因的轉(zhuǎn)導(dǎo)效率。慢病毒可以將外源基因有效的整合到細(xì)胞染色體中,在靶細(xì)胞中獲得持續(xù)高效穩(wěn)定的表達(dá)。慢病毒載體還可以攜帶5kb以上的目的基因,將cDNA克隆到慢病毒載體中。

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慢病毒載體的生產(chǎn)和用途示意圖(源自參考文獻(xiàn))

CAR-T細(xì)胞治療在多種癌癥的臨床上取得成功,是目前醫(yī)學(xué)研究前沿?zé)衢T(mén)的方向之一。CAR-T生產(chǎn)制備流程主要包括T細(xì)胞富集、分化、擴(kuò)增,通過(guò)病毒或非病毒載體進(jìn)行CAR基因轉(zhuǎn)移,然后再進(jìn)行體外CAR-T細(xì)胞擴(kuò)增,最終制成細(xì)胞產(chǎn)品。因此將特定的CAR基因轉(zhuǎn)導(dǎo)進(jìn)入T細(xì)胞的病毒載體是整個(gè)生產(chǎn)過(guò)程的關(guān)鍵原料。目前大部分CAR-T細(xì)胞的制備使用慢病毒載體,如諾華的Kymriah和Juno的Breyanzi,依靠慢病毒載體完成CAR-T細(xì)胞制造。

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CAR-T細(xì)胞治療示意圖(源自參考文獻(xiàn))

 

02慢病毒載體生產(chǎn)制備

慢病毒載體作為CAR-T的核心環(huán)節(jié),其質(zhì)量對(duì)細(xì)胞產(chǎn)品及其治療效果具有直接影響。雖然生產(chǎn)慢病毒載體的步驟并不復(fù)雜,但如何大規(guī)模生產(chǎn)符合cGMP要求的高質(zhì)量慢病毒載體仍具有挑戰(zhàn)性。

慢病毒的生產(chǎn)是一個(gè)持續(xù)幾天的細(xì)胞培養(yǎng)過(guò)程,將病毒載體轉(zhuǎn)移到培養(yǎng)基中。主要有貼壁和懸浮兩種培養(yǎng)方式。小規(guī)模研究可以選擇貼壁培養(yǎng),但大規(guī)模生產(chǎn)需要懸浮培養(yǎng)。

慢病毒的大規(guī)模生產(chǎn)常用HEK293T細(xì)胞系,可以在沒(méi)有貼壁的情況下迅速懸浮生長(zhǎng)。將包裝細(xì)胞在培養(yǎng)基中傳代數(shù)次,達(dá)到一定數(shù)量后,用病毒包裝質(zhì)粒和目的基因載體質(zhì)粒共轉(zhuǎn)染細(xì)胞。在幾天的培養(yǎng)過(guò)程中,包裝細(xì)胞會(huì)產(chǎn)生大量慢病毒顆粒,可以從培養(yǎng)基中收獲。病毒載體純化可使用多種方法,例如梯度純化法或色譜法。

除了細(xì)胞系,慢病毒的懸浮無(wú)血清培養(yǎng)已逐步替代傳統(tǒng)的貼壁培養(yǎng)模式。懸浮培養(yǎng)能夠降低成本和污染風(fēng)險(xiǎn),培養(yǎng)及純化步驟更簡(jiǎn)單,更容易放大。在成本方面,培養(yǎng)基是不可忽略的因素,選擇來(lái)源和化學(xué)成分明確、不含血清的培養(yǎng)基,會(huì)極大的降低成本和簡(jiǎn)化下游純化工藝,并降低污染風(fēng)險(xiǎn)。義翹神州已成功開(kāi)發(fā)多款適用于HEK293細(xì)胞懸浮培養(yǎng)的無(wú)血清培養(yǎng)基,屬于無(wú)血清、無(wú)抗生素、無(wú)動(dòng)物源性組分的即用型培養(yǎng)基,可用于慢病毒載體大規(guī)模懸浮培養(yǎng)。

大規(guī)模生產(chǎn)還需要考慮雜質(zhì)去除,比如宿主DNA,在200L的反應(yīng)器中需要750mg的質(zhì)粒DNA,意味著轉(zhuǎn)染過(guò)程中會(huì)有大量的殘留,因此需要選擇合適的核酸酶進(jìn)行去除。

總的來(lái)說(shuō),理化性質(zhì)不穩(wěn)定,回收率低,培養(yǎng)體系和純化工藝等未攻克的問(wèn)題,依舊是慢病毒規(guī)模化生產(chǎn)的瓶頸和關(guān)鍵。

義翹神州慢病毒載體包裝相關(guān)產(chǎn)品

義翹神州可以提供慢病毒包裝的關(guān)鍵原材料如Sinofection® 轉(zhuǎn)染試劑、無(wú)血清HEK293培養(yǎng)基和質(zhì)粒生產(chǎn),以及慢病毒純化工藝過(guò)程中用于去除宿主核酸的GMP級(jí)核酸酶等。另外,我們也可提供全面的HEK293細(xì)胞庫(kù)檢定服務(wù),充分保障CAR-T藥物的安全性。

無(wú)血清細(xì)胞培養(yǎng)基及補(bǔ)料液

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SMM 293-CD1 培養(yǎng)基(貨號(hào):M293CD1)

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相同條件下,使用SMM 293-CD1培養(yǎng)基,HEK293F細(xì)胞密度更好。

 

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細(xì)胞轉(zhuǎn)染試劑

義翹神州擁有高品質(zhì)的轉(zhuǎn)染試劑 Sinofection® Transfection Reagent(Cat#: STF02),細(xì)胞毒性小、重復(fù)性高,可用于慢病毒載體的高效轉(zhuǎn)染,轉(zhuǎn)染效率基本可以達(dá)到95%以上

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GMP級(jí)核酸酶

義翹神州提供GMP級(jí)條件下生產(chǎn)的全-能核酸酶Super Nuclease(Cat#: GMP-SSNP01),無(wú)動(dòng)物源性,可高效降解單鏈、雙鏈、線(xiàn)性、環(huán)狀、超螺旋等任何形式的DNA及RNA。超高活性,應(yīng)用場(chǎng)景廣泛且使用量低不易殘留,質(zhì)量、性能、供貨能力可靠,并已完成在FDA的藥物主文件申報(bào)備案(DMF 號(hào):35978),滿(mǎn)足藥物申報(bào)的需求。

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相同條件下,不同用量的GMP級(jí)全-能核酸酶和其他品牌核酸酶對(duì)鮭魚(yú)精DNA 的降解效率相當(dāng)

 

細(xì)胞庫(kù)檢測(cè)

義翹神州遵循NMPA、FDA、EMA、ICH等多個(gè)國(guó)內(nèi)外法規(guī)和指導(dǎo)原則,建立了全面的細(xì)胞庫(kù)測(cè)定方法,助力于CAR-T細(xì)胞治療的安全性,主要包括以下幾個(gè)檢測(cè)方面:無(wú)菌檢查、支原體檢查、內(nèi)外源病毒污染檢查、成瘤性檢查等。

 

慢病毒包裝質(zhì)粒生產(chǎn)

義翹神州升級(jí)改造后的慢病毒質(zhì)粒制備平臺(tái),采用GMP級(jí)別的生產(chǎn)線(xiàn),對(duì)過(guò)程和最終產(chǎn)品的嚴(yán)格管控,確保了最終產(chǎn)品質(zhì)量符合客戶(hù)需求。義翹神州可以提供從μg級(jí)別、mg級(jí)別至g級(jí)別不同規(guī)模的科研級(jí)質(zhì)粒生產(chǎn)服務(wù),滿(mǎn)足不同的需求。

 

參考文獻(xiàn):

1. Xiaoyu Wang, et al. Recent advances in lentiviral vectors for gene therapy.

2. Natalia Elizalde and Juan Carlos Ramírez. Lentiviral vectors: key challenges and new developments.

3. Michael C. Milone and  Una O’Doherty. Clinical use of lentiviral vectors.

4. David Escors, Karine Breckpot. Lentiviral vectors in gene therapy: their current status and future potential.

5. Merten OW, Hebben M, Bovolenta C. Production of Sakuma,T.,Barry, M. A. and Ikeda, Y. Lentiviral vectors : basic to translational.


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