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細(xì)胞進(jìn)行免疫熒光染色主要有兩種方法

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細(xì)胞進(jìn)行免疫熒光染色,主要有兩種方法:直接法和間接法。

1.直接免疫熒光標(biāo)記法的樣品制備取細(xì)胞(約1×106個(gè)/m1),在每一管中分別加入適量熒光素標(biāo)記的一抗,充分混勻(如做雙標(biāo)或多標(biāo)染色,可把幾種標(biāo)記有不同熒光素的抗體同時(shí)加入),孵育20~60min后,用PBS洗1~2次,離心收集細(xì)胞,加入緩沖液重懸,上機(jī)檢測(cè)。直接染色法抗體較貴,但操作簡(jiǎn)便,結(jié)果準(zhǔn)確,適用于同一細(xì)胞群多參數(shù)同時(shí)測(cè)定。

2.間接免疫熒光標(biāo)記法的樣品制備取一定量的細(xì)胞懸液(約1×106個(gè)細(xì)胞/ml),先加入特異的*抗體,待反應(yīng)*后洗去未結(jié)合抗體,再加入熒光標(biāo)記的第二抗體,生成抗原,抗體-抗抗體復(fù)合物,以FCM檢測(cè)其上標(biāo)記的熒光素被激發(fā)后發(fā)出的熒光。本方法費(fèi)用較低,二抗應(yīng)用廣泛,多用于科研標(biāo)本的檢測(cè)。但由于二抗一般為多克隆抗體,特異性較差,非特異性熒光背景較強(qiáng),易影響實(shí)驗(yàn)結(jié)果。所以標(biāo)本制備時(shí)應(yīng)加入陰性或陽(yáng)性對(duì)照。另外,由于間接法步驟較多,增加了細(xì)胞的丟失,不適用測(cè)定細(xì)胞數(shù)較少的標(biāo)本。

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