類黃酮糖基轉移酶（UFGT）試劑盒說明書

HPLC 法 50T/48S

類黃酮糖基轉移酶試劑盒 抗氧

正式測定前務必取 2-3 個預期差異較大的樣本做預測定測定意義：

類黃酮是植物次生代謝產物，糖基化是類黃酮基本結構形成的最主要的修飾反應之一，提高了類黃酮苷元的化學穩(wěn)定性，這一過程主要由類黃酮糖基轉移酶催化的，使類黃酮-OH 與UDPG 反應，是黃酮合成途徑中的關鍵酶。

測定原理：

類黃酮糖基轉移酶催化花青素與尿苷二磷酸葡萄糖反應產生花青苷，主要以矢車菊素 3-葡萄糖苷（C3G）形式存在，用 HPLC 檢測產物可反映類黃酮糖基轉移酶的酶活性。

組成：

試劑一：粉劑×1 瓶，4℃避光保存。臨用前加全部試劑三溶解。

自備儀器和用品：

天平、研砵、離心機、恒溫水浴鍋、100 目篩、高校液相色譜、針頭過濾器（水系、0.22μm）、濾膜（水系、0.45μm）、耐水C18 柱（4.6×250mm）、樣品瓶、甲酸、甲醇（色譜級）、超純水

酶液提取:

組織：按照組織質量（g）：提取液體積(ml)為 1：2~5 的比例（建議稱取約 0.5g 組織，加入 1ml 提取液），進行冰浴勻漿。10000g ，4℃離心 10min，取上清，置冰上待測。

實驗前的準備工作：

1、檢測產物制備

2、將 500 ml 超純水和 500 ml 甲醇用 0.45 μm 的濾膜抽濾，以除去溶劑中的雜質，防止堵塞色譜柱。（注：蒸餾水用水系濾膜抽濾，甲醇用有機系濾膜抽濾）。

3、流動相的配制：流動相 A 為 1.6%甲酸水溶液； 流動相B 為 1.6%甲酸甲醇溶液。

4、將配好的流動相超聲 30 分鐘，以脫去溶劑中的氣泡，防止堵塞色譜柱。

5、標準品的配制：

在標準品中加入 1ml 甲醇，配成 5μmol /ml 母液，將母液用甲醇分別稀釋成 2μmol/ml ，1μmol/ml 、0.5μmol/ml 、0.25μmol/ml、0.125μmol/ml 的標準品溶液。針頭式過濾器過濾后待測。

測定操作表：

開啟電腦、檢測器和泵，安裝上色譜柱，打開軟件，在方法組中設置進樣量 10 μl，梯度洗脫為 0~5min，85%A+15%B; 5~10min，85%A+15%B; 10~30min，80%A+20%B; 30~30.1min， 60%A+40%B; 30.1~40min，0%A+100%B。流速 1ml/min，柱溫 30℃，走樣時間為 50min，檢測波長 530nm，設置完畢保存方法組。

初始設置流動相 A=85%，流動相B=15%，流速 1 ml/min，待基線穩(wěn)定后開始加樣。

加入標準品 10 μl，在 50min 內可分離C3G，C3G 的保留時間在 25min 左右，（柱子不同，保留時間有差異），計算不同濃度的C3G 標準品的峰面積。

加入樣品 10 μl，在相應保留時間處檢測C3G 的峰面積。

酶活計算：

以標準品濃度（μmol/ml）為橫坐標，峰面積為縱坐標計算 C3G 標準曲線。將樣品峰面積代入標準曲線，計算樣品C3G 含量。

酶活單位定義：

每毫克組織蛋白每分鐘催化反應產生 1μmolC3G 定義為一個酶活單位。

UFGT 活性（μmol/min/mg prot）= C×V 反總÷（V 樣×Cpr）÷ T=0.117×C÷Cpr

每克組織每分鐘催化反應產生 1μmolC3G 定義為一個酶活單位。

UFGT 活性（μmol/min/g 鮮重）= C×V 反總÷（V 樣×W÷V 樣總）÷ T=0.117×C÷W

C：C3G 濃度，μmol/ml ；V 反總：反應總體積，0.35ml；V 樣：加入樣本量，0.1ml，V 樣總：加入提取液體積，1ml，Cpr：蛋白含量，mg/ml；W：樣本質量，g，T：反應時間，min

注意事項：

1、流速由小到大調節(jié)，避免柱壓過大。

2、使用完畢時，先用 50%的甲醇水溶液洗色譜柱 45min，再用純甲醇沖洗色譜柱 30min。

3、標準品的稀釋倍數要根據樣品中C3G 濃度確定，樣品中C3G 的峰面積必須落在不同濃度的C3G 標準品的峰面積之內，該標準品稀釋倍數只是一個參考。

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